动脉粥样硬化(atherosclerosis,AS)是危害人类健康的常见疾病,研究表明,内皮细胞损伤和内皮功能紊乱参与了AS形成过程,因此,保护内皮细胞既是预防AS形成也是预防粥样斑块破裂的关键之一[1]。大豆低聚糖(soy oligosaccharides,SOS)和大豆低聚肽(soy oligopeptides,SOP)是近年从大豆中提取的两种生物活性物质[2,3]。SOS是存在于大豆中的可溶性糖分的总称,主要成分为水苏糖、棉子糖和蔗糖,而SOP是大豆蛋白经酶解而得的分子质量低于1 000的低分子肽。国内外学者研究发现SOS和SOP具有降血脂作用, 但有关SOS和SOP对血管活性物质和血液流变学的影响目前未见报道。本研究观察了大豆SOS和SOP对实验性高脂血症大鼠血管活性物质和血液流变学的影响,探讨其调节血脂及抗AS的可能机制。
1材料与方法
1.1材料
SOS由上海深远食品有限公司生产提供,总糖含量≥70%。SOP由山东中食都庆生物技术有限公司生产提供,肽含量≥80%。胆固醇及猪胆盐由成都科龙化工试剂厂提供。6KetoPGF1a、TXB2测定试剂盒由解放军总医院东亚免疫研究所提供,NO试剂盒为南京建成生物工程研究所产品。
1.2动物分组
选用第三军医大学实验动物中心提供的清洁级健康成年雄性SD大鼠60只,体质量190~210 g,实验室环境下以基础饲料适应性喂养1周,随机分为5组,每组12只,即正常饲料对照组(normal diet control group,NCG)、高脂饲料对照组 (high fat diet control group, HCG)、高脂饲料+2%SOS组(HF diet+2%SOS group,SOS)、高脂饲料+3%SOP组(HF diet+3%SOP group,SOP)、高脂饲料+2%SOS+3%SOP复合组(HF diet+2%SOS +3%SOP group,SOSP)。NCG组予以基础饲料,其余四组予以高脂饲料,其中SOS组高脂饲料中添加2%SOS,SOP组高脂饲料中添加3%SOP,SOSP组高脂饲料中添加2%SOS和3%SOP。大鼠单笼饲养,自由摄食与饮水,准确记录摄食量,每两周称一次体重,实验期为8周。动物室温度为20~23 ℃,湿度为40%~60%。基础饲料由第三军医大学实验动物中心配制:豆饼20%、小麦粉19%、玉米粉15%、大米粉20%、麸皮15%、鱼粉5%、骨粉3%、酵母1%、食盐1%、鱼肝油1%。高脂饲料配方:在基础饲料中添加10%猪油、2%胆固醇和1%胆盐。
1.3实验方法
在实验期末,禁食12 h后,经股静脉取血,血样分别置于5 ml离心管和5 ml肝素抗凝离心管中,室温放置2 h,以3 000 r/min离心15 min,制备血清和血浆,按试剂盒要求用酶法在全自动生化分析仪上测定TC、TG、LDLC、HDLC;用放射免疫法测定PGI2、TXA2,NO含量用硝酸还原酶法在721分光光度计上测定;全血粘度(viscosity of whole blood,WBV)采用重庆大学多维生物工程研究所的FASCO94A全自动血液粘度快速测定仪,以切变率γ1=200 s-1和γ1=2 s-1测定HWBV 和LWBV,血浆粘度(plasma specific viscosity,PSV)ηp用电子计算机自动分析的毛细管粘度计测定,红细胞压积(hematocrit,HCT)测定采用离心沉淀法,血液还原粘度(blood reduced viscosity,BRV)ηr按公式换算:ηr=(WBV-ηp)/ηp×HCT。
1.4统计学处理
实验数据以均数±标准差±s表示,采用统计软件SPSS 11.0 进行方差分析及t检验。
2结果
2.1SOS和SOP对大鼠血管活性物质的影响
实验期间HCG组血浆PGI2、NO含量较NCG组明显降低,而TXA2、TXA2/PGI2较NCG组明显增高( P<0.05)。经SOS和SOP干预的各实验组PGI2、NO含量较HCG组和NCG组都明显增高,而血浆TXA2水平和TXA2/PGI2比值均显着降低,以SOSP组复合干预最为显着,尤其在升高NO和降低TXA2、TXA2/PGI2方面与其他两组相比具有显着差异 (P<0.05)。(表1)
2.2SOS和SOP对大鼠血液流变学的影响
HCG组HWBV(γ1=200 s-1) 和LWBV(γ1=2 s-1)较 NCG组显着增高(P<0.01)。而实验各组HWBV和LWBV均较HCG组明显降低 (P<0.01)。实验组之间相比,SOP组HWBV显着低于SOS组、SOSP组,SOSP组显着低于SOS组;SOSP组LWBV显着低于SOS组、SOP组,而SOP组显着低于SOS组(P<0.01)(表2)。
HCG组的ηp、ηr、HCT显着高于NCG组水平,与HCG组比较实验各组ηp、ηr、HCT均明显降低(P<0.01)。实验组之间相比,SOP组、SOSP组ηp显着低于SOS组 (P<0.01),而SOP组和SOSP组之间无差异;SOS组、SOSP组ηr显着低于SOP组(P<0.01),而SOS组和SOSP组之间无差异;SOSP组HCT显着低于SOS组、SOP组, SOP组显着低于SOS组(P<0.01)。以SOSP组降低ηp、ηr和HCT效果最佳(表3)。表1SOS和SOP对大鼠血管活性物质的影响表2SOS和SOP对大鼠HWBV、LWBV的影响表3SOS和SOP对大鼠ηp、ηr、HCT的影响
3讨论
血浆中高水平的LDL,尤其是氧化型LDL可使内皮细胞发生损伤,使致AS性脂蛋白易于进入动脉内膜下沉积,而内皮功能障碍会破坏内皮生成的血管舒张因子和血管收缩因子的平衡,导致血管舒缩异常[45]。已发现在不稳定斑块表面的内皮细胞表达多种细胞黏附分子,使大量单核细胞及淋巴细胞进入粥样斑块,因此保护内皮细胞既是预防AS病变形成也是预防粥样斑块破裂的关键之一[6]。
内皮细胞活性物质TXA2和PGI2是花生四烯酸代谢产物。PGI2是强烈的血管舒张剂和血小板聚集抑制剂,具有抑制凝血和血栓形成等防治
冠心病作用,而TXA2是强烈的血管收缩剂和血小板聚集促进剂,其作用正好与PGI2相拮抗[7]。因此PGI2合成减少或TXA2合成过多与AS发生密切相关,而TXA2和PGI2平衡是维持正常血管功能及保护内皮细胞免受损伤的重要环节,也是防治CHD的重要途径。有文献报道,
高血脂能影响TXA2和PGI2代谢,升高TXA2/PGI2比值[8]。本实验发现,给大鼠饲喂高脂膳食后,HCG组血浆TXA2含量和TXA2/PGI2较NCG组显着升高,而PGI2含量显着下降,说明高脂血症能影响TXA2和PGI2的代谢,使TXA2合成过多而PGI2合成减少,导致血管功能异常,促进AS病变发生。而各实验组尤其是联合干预的SOSP组能显着降低高脂血症大鼠TXA2水平,增高PGI2血浆含量,从而明显降低TXA2/PGI2比值。提示SOS和SOP能有效调节TXA2和PGI2之间的平衡,保护内皮细胞及减轻内皮功能障碍,减少血栓形成和维护正常的血管舒缩功能,起到抗AS和预防CHD作用。
功能不良的内皮细胞重要特征之一就是合成分泌NO减少,使动脉的内皮依赖性血管舒张功能障碍,引起AS早期病变[9]。本实验中HCG组血浆NO含量较NCG组明显减少,也说明了内皮源性NO生成减少导致内皮依赖性血管舒张功能受损是高脂血症引起的血管病变和AS的早期特征之一。另有研究表明[10],NO在生物体内作为一种超氧阴离子自由基清除剂,可通过清除氧自由基来抑制脂质过氧化等作用;NO还具有抑制血小板聚集、单核细胞粘附作用,因此能预防AS性疾病的发生。本实验结果显示高脂膳食大鼠经SOS和SOP干预后,血浆NO含量明显升高,达到NCG组水平,尤其以复合干预效果最为显着,表明SOS和SOP能有效改善高脂血症引起的NO不足及内皮依赖性血管舒张反应下降,通过提高NO,清除体内过多自由基,防止脂质过氧化,及减少单核细胞在内皮下粘附等作用有效预防AS性疾病的发生。
有研究显示[11],高脂血症时红细胞膜中胆固醇含量增高,红细胞变形能力下降而HWBV增大,并使红细胞聚集性增加而LWBV增大;高脂血症患者血浆大分子脂蛋白过多,使PSV、BRV增高。血液和血浆粘滞度的升高可损害微循环血流、在血液与内皮细胞界面发生切变应力异常、使血浆蛋白易与内皮细胞发生作用、增加血栓形成倾向,导致粥样硬化性血栓形成。本实验中,用高脂膳食喂饲大鼠后发现大鼠HWBV、LWBV、PSV、BRV以及HCT均较正常膳食大鼠显着增高,而干预的各组均有明显下降,说明SOS和SOP可通过提高红细胞的变形能力,降低红细胞的聚集性来改变血液的粘滞状态,降低血液及血浆粘度,预防血中脂质在主动脉壁的沉积。脂质过氧化的中间产物自由基与最终分解产物丙二醛对细胞膜起损伤作用,影响膜的流动性和交换功能,使膜的脆性增大,变形性降低,红细胞刚性增强,SOS和SOP可能通过抗脂质过氧化,减少自由基与MDA对细胞膜的损伤作用,从而维护红细胞正常功能,改善高血脂状态下血液流变学异常。
本实验结果表明,三个实验组不仅能有效降低高脂血症大鼠血清TC、TG、LDLC和升高HDLC水平,还能调节高脂血症大鼠体内TXA2、PGI2、NO等血管内皮细胞活性物质生成,改善血液流变学异常,因此具有明显的调节血脂紊乱,抗AS和保护心血管的作用,并以SOS和SOP联合应用效果最佳,这为开发大豆低聚糖和多肽复合物在心血管保健品方面提供了资料。(参考来源:大豆低聚糖和低聚肽对高脂血症大鼠血管活性物质和血液流变学的影响,谢莎丽,局解手术学杂志2007年第16卷第5期)